Login
欢迎浏览恩派尔生物资料网
我要投稿 请登录 免费注册 安全退出

  • 实验室菜鸟的细胞培养心得

    实验室菜鸟的细胞培养心得

    作为一只刚进实验室的菜鸟把自己遇到的东东总结一点发出来,抛砖引玉吧,为即将进实验室的朋友些资料,同时欢迎老鸟们指正。1、在实验室登记领试剂和药品pbs 1640

    2024-12-17 20
  • DC培养的几点疑问

    DC培养的几点疑问

    最近忙于用邮箱回答网友们关于DC培养的问题。其中比较突出的问题是DC数量少或养不出来DC,细细比较他们的培养方法,发现许多网友采用“用不含GM-CSF的1640

    2024-12-17 19
  • 骨髓间充质干细胞(MSC)原代培养与传代培养

    骨髓间充质干细胞(MSC)原代培养与传代培养

    准备工作(1)试管、试管架、滴管、吸管、小鼠固定架、玻璃瓶、玻璃皿、烧杯、橡皮头、剪刀、镊子、纱布、棉球、酒精灯、滴管、移液器、细胞计数器、生理盐水、PBS、双

    2024-12-17 36
  • 转管及转瓶培养

    转管及转瓶培养

    转管培养法(roller tube culture)是Gey 提出的,实验室常用,为了扩大细胞产量,将试管改用转瓶,故称转瓶培养,其培养方法是一样的,试管或转瓶

    2024-12-17 26
  • 干粉培养基的配制

    干粉培养基的配制

    注意事项1.认真阅读说明书。说明书都注明干粉不包含的成分,常见的有NaHCO3、谷氨酰胺、丙酮酸钠、HEPES等。这些成分有些是必须添加的,如NaHCO3、谷氨

    2024-12-17 24
  • 细胞培养基本概念和环境

    细胞培养基本概念和环境

    一、细胞培养基本概念细胞培养是指从体内组织取出细胞摹拟体内出现环境,在无菌、适当温度及酸碱度和一定营养条件下,使期生长繁殖,并维持其结构和功能的一种培养技术。

    2024-12-17 24
  • 正常大鼠主动脉内皮细胞的培养

    正常大鼠主动脉内皮细胞的培养

    实验材料:1. 大鼠主动脉血管;2. 不含Ca2+ 和Mg2+ 的1PBS,添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素,pH7.2;3. 培养用液:M

    2024-12-17 23
  • 肿瘤细胞/细胞系的培养

    肿瘤细胞/细胞系的培养

    肿瘤细胞在组织培养中占有核心的位置,首先癌细胞是比较容易培养的细胞。当前建立的细胞系中癌细胞系是最多的。另外肿瘤对人类是威胁最大的疾病。肿瘤细胞培养是研究癌变机

    2024-12-17 32
  • 肿瘤细胞的原代培养方法

    肿瘤细胞的原代培养方法

    肿瘤细胞对培养基的要求不如正常细胞严格,一般常用RPMI、DMEM、McCoy-5A等培养基,血清浓度不高,10%即可,建议最好在原代培养时能加入生长因子或原患

    2024-12-17 42
  • 植物细胞培养技术

    植物细胞培养技术

    植物细胞培养技术就是为了某种目的而在细胞水平上对离体植物细胞或原生质体进行的一系列生物工艺学操作。它包括分离、培养、再生以及一系列相关的操作。就有用化合物的生产

    2024-12-17 24
  • 支原体污染

    支原体污染

    支原体是一种大小介于细菌和病毒之间(最小直径0.2um)并独立生活的微生物.约有1%可通过滤菌器。支原体无细胞壁形态呈高度多形性.可为圆形、丝状或梨形。支原体形

    2024-12-17 25
  • 细胞培养中支原体污染的特点及检验

    细胞培养中支原体污染的特点及检验

    支原体是一种大小介于细菌和病毒之间(最小直径0.2um)并独立生活的微生物。约有1%可通过滤菌器。支原体无细胞壁形态呈高度多形性。可为圆形、丝状或梨形。支原体形

    2024-12-17 21
  • 有关细胞支原体污染的经验讨论

    有关细胞支原体污染的经验讨论

    支原体是一类缺乏细胞壁的原核细胞型微生物,大小一般在0.3-0.5um之间,呈高度多形性,有球形、杆形、丝状、分枝状等多种形态。它不同于细胞,也不同于病毒。支原

    2024-12-17 26
  • 细胞支原体污染的PCR检测

    细胞支原体污染的PCR检测

    支原体菌株来源:M.Arginini ATCC23838 精氨酸支原体M.FermentaneATCC19989发酵支原体M.SalivariumATCC230

    2024-12-17 36
  • Preparation of low density, collagenase-digested splenocytes Protocol

    Preparation of low density, collagenase-digested splenocytes Protocol

    1. Dilute 2 ml of 4000 U/ml Collagenase D as follows: 1 ml into 9 ml HBSS/Ca2+/M

    2024-12-17 30