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改良的Boyden 小室法观察细胞的的运动性
该方法常用来检测白细胞和巨噬细胞的趋化性,后经改良用于肿瘤细胞运动性、侵袭性等的测定。Boyden 小室由上、下两个室组成,两室中间由带微孔的滤膜分隔,也可用鸡
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提高RNA转染效率的几点建议
1.纯化RNA在转染前要确认RNA的大小和纯度。为得到高纯度的RNA,推荐用玻璃纤维结合,洗脱或通过15-20%丙烯酰胺胶除去反应中多余的核苷酸,小的寡核苷酸,
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慢病毒感染后,未能实现相关敲降的原因是什么?
慢病毒感染后未能实现敲降的原因可能有多种。以下是一些可能的原因及其解释:慢病毒包装质量问题:病毒滴度较低,导致感染效率不高,可能无法有效转导目标细胞。病毒颗粒中
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实验室小白篇:细胞培养用的液体
一、细胞培养所需的培养液在细胞的研究和利用过程中,最主要的是要为细胞提供最适的生长条件,保持细胞培养开始时的群体状态。这就要求培养条件始终如一,近乎呆板地坚守细
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RNA转染过程中细胞毒性大怎么办?
RNA转染时细胞毒性大可能的原因有:1.RNA与转染试剂比例不佳。建议进行预实验优化。2.细胞密度不佳。调整细胞密度。3.细胞污染。建议彻底清洁所有细胞培养相关
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人胚胎肺成纤维细胞的培养
成纤维细胞作为体外最易培养成功的正常细胞,用途广泛。但由于其有限的传代寿命,通常用于细胞衰老的研究,在肿瘤研究中,常常作为正常细胞对照,用于研究细胞恶性转化的条
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慢病毒感染细胞后,细胞长满48小时是否可以先传代,再等到72小时再喷霉素筛选吗
通常在进行慢病毒感染后,建议遵循以下操作步骤:感染后观察细胞状态:感染后一般在48-72小时内可以看到较为明显的表达,但是否开始筛选需要看细胞的状态和感染效率。
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电转染过程中易出现的问题
1. 不合适的电场强度合适的电场强度对于电转染实验非常重要,电场强度不能过高,过高会增加细胞的死亡率;也不能过低,过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同细
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细胞的支原体检测——扫描电子显微镜法
(一)原理利用电子显微镜的超级放大功能, 直接观察培养细胞中支原体污染情况。(二)材料与设备待检测细胞, 0.05%胰蛋白酶/0.02%EDTA 、2.5%的戊
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贴壁细胞的分瓶操作步骤
1.从细胞单层吸出培养基。2. 缓慢加入37’C 温浴的PBS 或不含血清的培养基,让培养基沿容器壁流下,注意不要滴在细胞上,以免冲掉附着不牢的细胞。3. 再吸
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细胞电转染实验的几点建议
1. 电场强度要合适合适的电场强度对于电转染实验非常重要,电场强度不能过高,过高会增加细胞的死亡率;也不能过低,过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同
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为什么脂质体细胞转染试剂毒性大?
已有众多的文献报道,脂质体本身会参与细胞生理活动,引起基因表达的上调或下调。如参与PKC(蛋白激酶C)通路调节(Biochemistry.1992 Sep 22
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监测慢病毒载体储备液中的可复制型病毒
一、试剂完全培养基、DMEM 培养基、胎牛血清(FBS )、慢病毒载体储备液、OptiMEM-I、青霉素/链霉素( P/S ) 溶液(100)、磷酸盐缓冲盐水(
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RNA细胞转染过程注意事项
1.纯化RNA在转染前要确认RNA的大小和纯度。为得到高纯度的RNA,推荐用玻璃纤维结合,洗脱或通过15-20%丙烯酰胺胶除去反应中多余的核苷酸,小的寡核苷酸,
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实验中最常见的英文缩写词汇释义
alkphos 碱性磷酸酶amp 氨苄青霉素AMVRT 鸟类粒细胞病毒反转录酶ANOVA 方差分析BAC 细菌人工染色体β-gal β-半乳糖苷酶Bis N