分子生物学常用试剂的配制

1．LB(Luria-Bertani)培养液、平板的配制配制每升LB培养液，应在950ml去离子水中加入：

细菌培养用酵母提取物（bacto-yeastextract）5g

细菌培养用胰化蛋白胨（bacto-tryptone）10g

NaCl10g

摇动容器直至溶质完全溶解，用5mol/LNaOH(约0.2ml)调节pH值至7.0，加入去离子水至总体积为1L，在151bf/in2(1.034×105Pa)高压下蒸汽灭菌20min。

L琼脂平板的配制：

先按上述配方配制液体培养基，临高压灭菌前加入琼脂糖15g/L，同法高压蒸汽灭菌20min。从高压灭菌器取出培养基时应轻轻旋动以使熔解的琼脂糖能均匀分布于整个培养基溶液中，应使培养基降温至50℃时，加入抗生素等不耐热的物质。为避免产生气泡，混匀培养基时应采取旋动的方式，然后可直接从烧瓶中倾出培养基铺制平板。90mm直径的培养皿约需30－50ml培养基，培养基完全凝结后，应倒置平皿并贮存于4℃备用。 2．琼脂糖凝胶的配制根据所需凝胶的浓度秤取琼脂糖，加入相应电泳缓冲液中，用微波炉加热煮沸至琼脂糖完全溶解，加入适量E混匀，适当冷却后倾入凝胶铸槽中，插入梳子，凝胶厚度不超过梳孔，如有气泡产生则用玻璃棒驱除，不能过早拔除梳子，应待凝胶完全凝结后才能拔除梳子。 3．P1、P2、P3的配制P1的配制：在800ml去离子水中溶入Tri碱6.06g，Na2EDTA 2H2O3.72g，用HCl调整H至8.0，用去离子水调整容积至1升，每升P1内加入RNaseA100mg。

P2的配制：在950ml去离子水中溶入aOH8.0g，20％SD50ml，调整容积至1升。

P3的配制：在500ml去离子水中溶入醋酸钾294.5g，用冰醋酸调整H值至5.5，用去离子水调整容积至1升。 4．常用缓冲液：TEpH7.410mmol/LTris-HCl(pH7.4)1mmol/LEDTA(pH8.0)

pH7.610mmol/LTris-HCl(pH7.6)1mmol/LEDTA(pH8.0)

pH8.010mmol/LTris-HCl(pH8.0)1mmol/LEDTA(pH8.0)

STE(亦称TEN)0.1mmol/LaCl10mmol/LTris-HCl(pH8.0)1mmol/LEDTA(pH8.0)

STET0.1mmol/LaCl10mmol/LTris-HCl(pH8.0)1mmol/LEDTA(pH8.0)5%TritoX-100

TNT10mmol/LTris-HCl(pH8.0)150mmol/LaCl0.05%Twee20

电泳缓冲液

Tris-乙酸（TAE）：50×浓贮存液（每升）：242gTri碱

5. 7.1ml冰乙酸

100ml0.5mmol/LEDTA(pH8.0)

使用时再稀释50倍。